پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شمارهها | 1,101 |
| تعداد مقالات | 9,444 |
| تعداد مشاهده مقاله | 17,019,965 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 11,936,810 |
بررسی تاثیر نانوذرات اکسید نیکل بر استرس اکسیداتیو سلولی در ماهی Carassius auratus | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| دوره 11، شماره 4 - شماره پیاپی 44، خرداد 1402، صفحه 1-14 اصل مقاله (1.04 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/eab.2023.63451.1879 | ||
| نویسندگان | ||
| مجتبی قربان پور دلاور؛ شایان قبادی* ؛ صابر وطن دوست؛ حامد منوچهری؛ رضا چنگیزی | ||
| گروه شیلات، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران | ||
| چکیده | ||
| پرکاربردترین نانوذرات، نانوذرات اکسیدفلزی هستند که باتوجه به کاربرد گسترده در حیطههای مختلف و افزایش انتشار آنها، تاثیر بالقوهای بر محیط زیست و موجودات آبزی دارد. این تاثیر بهواسطه افزایش نسبت سطح به حجم آنها، افزایش واکنشپذیری شیمیایی و زیستی میگردد که منجر به افزایش تولید رادیکالهای آزاد، اختلال در اکسیداسیون و احیاء و بروز آسیب اکسیداتیو و بیماری میگردد. این پژوهش با هدف بررسی اثر اکسیدانی نانوذره اکسیدنیکل در ماهی Carassius auratus میباشد که میتواند افق جدیدی را در رابطه با چالشهای موجود در محیطهای آبی باز نماید. گروههای مورد مطالعه شامل گروه شاهد، گروه تیمار با نانوذره اکسیدنیکل (30میلیگرم) میباشد. هر تیمار با سه تکرار هرکدام شامل 12ماهی در هر تکرار بودند. پس از پایان دوره نمونههای کبد جدا و جهت بررسی آسیبهای اکسیداتیو جمعآوری شدند. سطح تام آنتیاکسیدان، MDA، گلوتاتیون و آنزیمهای آنتیاکسیدانی کاتالاز، گلوتاتیون S- ترانسفراز و سوپراکسیددیسموتاز در تمام گروهها اندازهگیری شد. نتایج نشان داد که تیمار با نانوذره اکسید نیکل سبب کاهش سطح آنتیاکسیدان تام و افزایش سطح MDA در گروه تیمار با نانوذره اکسید نیکل شد. این نتایج شواهد محکمی از القای استرس اکسیداتیو سلولی ناشی از قرار گرفتن در معرض نانوذره اکسید نیکل را نشان داد. همچنین با مقایسه تیمارهای کنترل و تیمار نانوذره اکسیدنیکل میتوان چنین نتیجه گرفت که رویارویی بلندمدت با نانوذره اکسید نیکل میتواند موجب تشدید آسیبهای اکسیداتیو واردشده به بافت کبد ماهیان گردد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| لوتاتیون؛ کاتالاز؛ استرس اکسیداتیو؛ نانوذره نیکل اکسید؛ ماهی Carassius auratus | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Investigating the effect of nickel oxide nanoparticles on cellular oxidative stress in Carassius auratus | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Mojtaba Ghorbanpour delavar؛ Shayan Ghobadi؛ Saber Vatandoust؛ Hamed Manouchehri؛ Reza Changizi | ||
| Department of aquaculture, Babol branch, Islamic Azad University, Babol, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Metal oxide nanoparticles are one of the most widely used compounds among nanoparticles that have wide applications in various fields and thus increase their release into the environment and their potential impact on various organisms, especially aquatic organisms in the aquatic ecosystem. Nanoparticles have high chemical and biological reactivity by increasing their surface to volume ratio, which leads to increased production of free radicals. The produced free radicals disrupt the oxidation and natural regeneration of the body's cells and cause oxidative damage in organisms and many diseases. The aim of this study was to investigate the oxidative effect of nickel nanoparticles in Carassius auratus that could open a new horizon in relation to the challenges in aquatic environments. The study groups include the control group and the treatment group with nickel nanoparticles. Each treatment with three replications each included 12 fish per replication. At the end of the period, liver samples were isolated and collected for oxidative damage. Total antioxidant levels, MDA, glutathione and the antioxidant enzymes catalase, glutathione S-transferase and superoxide dismutase were measured in all groups. The results showed that treatment with nickel oxide nanoparticles decreased the level of total anti oxidants and increased the level of MDA in the group treated with nickel oxide nanoparticles. These results showed strong evidence of inducted of cellular oxidative stress induced by exposure to nickel oxide nanoparticles. Also, by comparing the control treatments and the treatment of nickel oxide nanoparticles, it can be concluded that long-term exposure to nickel oxide nanoparticles can aggravate oxidative damage to fish liver tissue. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Glutathione, Catalase, Oxidative stress, Nickel oxide nanoparticles, Carassius auratus. | ||
| مراجع | ||
|
Aebi, H. (1984). Catalase in vitro. Methods in enzymology, 105, 121-126.
Aghamirkarimi, S., Mashinchian Moradi, A., Sharifpour, I., Jamili, S., & Ghavam Mostafavi, P. (2018). Effect of copper nanoparticles in the Caspian Roach (Rutillus rutillus caspicus), changing antioxidant activities and liver histopathology.
Anoosha, F., Seyedalipour, B., & Hoseini, S. (2020). Toxicity of Nickel Nanoparticles and Nickel Chloride on Activity of Antioxidant Enzymes and Level of Lipid Peroxidation in Liver and Serum of Rats. ISMJ, 23(1), 14-26.
Baek, Y. W., & An, Y. J. (2011). Microbial toxicity of metal oxide nanoparticles (CuO, NiO, ZnO, and Sb2O3) to Escherichia coli, Bacillus subtilis, and Streptococcus aureus. Science of the total environment, 409(8), 1603-1608.
Bita, S., Mesbah, M., Shahryari, A., & Najafabadi, M. G. (2017). Effects of silver nanoparticles synthesized by bioreduction method on gill antioxidant defense system response of common carp, Cyprinus carpio. Iranian Journal of Health and Environment, 10(3), 339-348.
Blewett, T. A., & Wood, C. M. (2015). Salinity-dependent nickel accumulation and oxidative stress responses in the euryhaline killifish (Fundulus heteroclitus). Archives of environmental contamination and toxicology, 68(2), 382-394.
Bradley, P. P., Priebat, D. A., Christensen, R. D., & Rothstein, G. (1982). Measurement of cutaneous inflammation: estimation of neutrophil content with an enzyme marker. Journal of Investigative Dermatology, 78(3), 206-209.
Buege, J. A., & Aust, S. D. (1978). Microsomal lipid peroxidation. In Methods in enzymology (Vol. 52, pp. 302-310). Academic press.
Choi, J. E., Kim, S., Ahn, J. H., Youn, P., Kang, J. S., Park, K. & Ryu, D. Y. (2010). Induction of oxidative stress and apoptosis by silver nanoparticles in the liver of adult zebrafish. Aquatic Toxicology, 100(2), 151-159.
Chowdhury, M. J., Bucking, C., & Wood, C. M. (2008). Pre-exposure to waterborne nickel downregulates gastrointestinal nickel uptake in rainbow trout: indirect evidence for nickel essentiality. Environmental science & technology, 42(4), 1359-1364.
Das, K. K., Das, S. N., & Dhundasi, S. A. (2008). Nickel, its adverse health effects & oxidative stress.Indian journal of medical research, 128(4), 412.
Di Giulio RT, Meyer JN. (2008)Reactive oxygen species and oxidative stress. The toxicology of fishes: 273-324.
Doreswamy, K., Shrilatha, B., & Rajeshkumar, T. (2004). Nickel‐induced oxidative stress in testis of mice: evidence of DNA damage and genotoxic effects. Journal of andrology, 25(6), 996-1003.
Fathi, M., Mansouri, B., Azadi, N., Davari, B., & Maleki, A. (2017). Effect of silver nanoparticles and mercury on stress index of laboratoryfish.
Giannopolitis, C. N., & Ries, S. K. (1977). Superoxide dismutases: I. Occurrence in higher plants. Plant physiology, 59(2), 309-314.
Govindasamy, R., & Rahuman, A. A. (2012). Histopathological studies and oxidative stress of synthesized silver nanoparticles in Mozambique tilapia (Oreochromis mossambicus). Journal of Environmental Sciences, 24(6), 1091-1098.
Habig, W. H., Pabst, M. J., & Jakoby, W. B. (1974). Glutathione S-transferases: the first enzymatic step in mercapturic acid formation. Journal of biological Chemistry, 249(22), 7130-7139.
Jezierska B, Witeska M. (2001) Summary of metal-induced disturbances in fish organism. Metal Toxicity to Fish Wydawnictvo Akademii Podlaskej, Siedlce. 243-214.
Joly-Pottuz, L., Vacher, B., Le Mogne, T., Martin, J. M., Mieno, T., He, C. N., & Zhao, N. Q. (2008). The role of nickel in Ni-containing nanotubes and onions as lubricant additives. Tribology Letters, 29(3), 213-219.
Karimzadeh, K., Zahmatkesh, A., & Sharifi, E. (2018). Effect of Subacute Toxicity Nano Zinc Oxide (ZnO NPs) on Oxidative Stress Enzymes of Roach (Rutilus rutilus caspicus).
Kazemian, M., & Bakhshi, M. (2019). Performance of different levels of ZnO nanoparticles on the amount of antioxidant enzymes in the liver of Koi fish (Cyprinus carpio). Journal of Animal Environment, 11(4), 243-248.
Kubrak, O. I., Husak, V. V., Rovenko, B. M., Poigner, H., Kriews, M., Abele, D., & Lushchak, V. I. (2013). Antioxidant system efficiently protects goldfish gills from Ni2+-induced oxidative stress. Chemosphere, 90(3), 971-976.
Kubrak, O. I., Rovenko, B. M., Husak, V. V., Storey, J. M., Storey, K. B., & Lushchak, V. I. (2012). Nickel induces hyperglycemia and glycogenolysis and affects the antioxidant system in liver and white muscle of goldfish Carassius auratus L. Ecotoxicology and environmental safety, 80, 231-237.
Lopes, P. A., Pinheiro, T., Santos, M. C., da Luz Mathias, M., Collares-Pereira, M. J., & Viegas-Crespo, A. M. (2001). Response of antioxidant enzymes in freshwater fish populations (Leuciscus alburnoides complex) to inorganic pollutants exposure. Science of the total environment, 280(1-3), 153-163.
Lushchak VI. (2011). Environmentally induced oxidative stress in aquatic animals. Aquatic Toxicology, 101(1): 13-30.
Lushchak, V. I. (2011). Environmentally induced oxidative stress in aquatic animals. Aquatic toxicology, 101(1), 13-30.
Matés, J. M., Pérez-Gómez, C., & De Castro, I. N. (1999). Antioxidant enzymes and human diseases. Clinical biochemistry, 32(8), 595-603.
Mohammadi, M., sattari, M., Babakhani, A., Johari, S., Ghafoori, H. (2018). Effects of iron oxide nanoparticles on the antioxidant defense system and lipid peroxidation of liver in common carp (Cyprinus carpio). Journal of Animal Environment, 10(4), 325-330.
Saini, S., Nair, N., & Saini, M. R. (2013). Embryotoxic and teratogenic effects of nickel in Swiss albino mice during organogenetic period. BioMed research international, 2013.
Sevcikova M, Modrá H, Slaninova A, Svobodova Z. (2011) Metals as a cause of oxidative stress in fish: A review. Veterinarni Medicina, 56(537-546(.
Sun, Y. P., Li, X. Q., Zhang, W. X., & Wang, H. P. (2007). A method for the preparation of stable dispersion of zero-valent iron nanoparticles. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects, 308(1-3), 60-66.
Wells, M. L., Smith, G. J., & Bruland, K. W. (2000). The distribution of colloidal and particulate bioactive metals in Narragansett Bay, RI. Marine Chemistry, 71(1-2), 143-163. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 395 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 174 |
||