پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شمارهها | 1,100 |
| تعداد مقالات | 9,434 |
| تعداد مشاهده مقاله | 17,002,458 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 11,927,052 |
بررسی تغییرات بافتی آبشش در لاروهای تازه تفریخ شده ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) متعاقب تجویز غلظتهای مختلف نانو ذرات نقره | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| مقاله 9، دوره 3، شماره 3، اسفند 1393، صفحه 13-22 اصل مقاله (658.92 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| نویسندگان | ||
| علی لوئی منفرد* 1؛ عباس خلیلی2؛ لیلا خلیلی3؛ محمدرضا کلباسی4 | ||
| 1دانشیار، گروه علوم پایه دانشکده پیرادامپزشکی، دانشگاه ایلام | ||
| 2دانشجوی کارشناسی ارشد بافتشناسی،دانشکده منابع طبیعی و علوم دریا، دانشگاه تربیت مدرس، نور | ||
| 3دانشجوی دکتری بافتشناسی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز | ||
| 4دانشیار، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریا، دانشگاه تربیت مدرس، نور | ||
| چکیده | ||
| چکیده پژوهش حاضر به بررسی تغییرات بافتی آبشش در لارو ماهی قزلآلای رنگینکمان متعاقب تجویز نانو ذرات نقره به روش مستقیم (نانو ذرات نقره به صورت کلوئید) و غیرمستقیم (به صورت فیلتر زئولیت پوشش یافته توسط نانو ذرات نقره) می پردازد. 300 قطعه لارو تازه تفریخ شده به صورت تصادفی به شش گروه مساوی تقسیم و به ترتیب در معرض کلوئید نانو ذرات نقره با غلظتهای 015/0، 031/0، 062/0 ، 125/0، 25/0 و 5/0 ppm و در مدت زمان 25 روز قرار گرفت. در روش غیرمستقیم50 قطعه لارو در انکوباتور مجهز به فیلتر زئولیت پوشش یافته توسط 5/0 درصد نانو ذرات نقره قرار گرفت. 50 قطعه لارو در انکوباتور فاقد هرگونه مواد افزودنی به عنوان گروه شاهد قرار گرفت. در روزهای 4، 8، 12 و 25 از دوره آزمایش، مقاطع بافتی آبشش تهیه و به روش هماتوکسیلین- ائوزین رنگآمیزی و تغییرات بافتی با میکروسکوپ نوری به صورت کیفی و کمی مطالعه شد. تماس مستقیم با دوز 062/0 نانو ذرات نقره موجب بروز آسیبهای بافتی شامل آنوریسم در تیغههای ثانویه آبششی، هیپرپلازی بافت پوششی تیغههای آبششی، پیچ خوردگی و به هم چسبیدگی تیغههای آبشش، ادم و تغییر بافت پوششی سطح تیغههای آبششی شد. همچنین با افزایش میزان غلظت نانو ذرات نقره، میانگین قطر لاملا و فیلامنت نسبت به گروه شاهد افزایش معنیداری یافت (05/0>P). بر اساس این مطالعه در صورت بهکارگیری نانو ذرات نقره به عنوان یک ماده ضدعفونی کننده در لارو ماهی قزلآلای رنگین کمان بهتر است از انکوباتور مجهز به فیلتر زئولیت استفاده گردد. | ||
| کلیدواژهها | ||
| نانو نقره؛ لارو؛ آبشش؛ بافتشناسی؛ Oncorhynchus mykiss | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Survey on the histological alterations of the gill of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larva exposed to various concentrations of the silver nanoparticles | ||
| نویسندگان [English] | ||
| A Louei Monfared1؛ A Kalili2؛ L Khalili3؛ M.R Kalbasi4 | ||
| چکیده [English] | ||
| Abstract Present work investigates the effects of nanosilver administration on histology of gill by direct and indirect methods in rainbow trout larva. In the direct mode, 300 larvae were divided to 6 equal groups randomly and exposed to 0.015, 0.031, 0.062, 0.125, 0.25 and 0.5 ppm over 25 days. In the indirect mode, 50 larvae were exposed to zeolite covered by silver nanoparticles. In addition, 50 larvae were kept in the incubators which free of any additive nanomaterials as control. In all of the experimental groups, on the days 4, 8, 12 and 25 after treating tissue samples were taken and histological alterations of the gill were examined. In the gill tissues of the direct exposed to nanosilver as 0.062 and greater concentrations; severe histoloogical and histometrical alterations include aneurism in the secondary lamellae of gills, hyperplasia of epithelium of gills as well as the adhesion of the gill lamellae were seen, as compared with control animals. In addition, in the direct exposing method; any increasing in the silver nanoparticles concentrations could lead to significant elevation in the gill lamellar as well as filament diameters (p≤0.05). Furthermore, indirect exposure to silver nanoparticles could not affect the gill integrity. It is concluded that nanosilver administration in the larval stage of the trout must be taken by zeolite covered by silver nanoparticles. | ||
| کلیدواژهها [English] | ||
| Silver nanoparticles, Larva, Gill, Histology, Oncorhynchus mykiss | ||
| مراجع | ||
|
Asharani, P.V.; Wu, Y.L.; Gong, Z.; Valiyaveettil, S.; (2008). Toxicity of silver nanoparticles in zebrafish models. Nanotechnology; 19: 255102.
Choi, T.E.; et.al. (2009). Induction of oxidactive stress and apoptosis by silver nano particles in the liver of adult zebrafish. Aquat. toxicol. 12-120
Chen, X.; Schluesener, HJ.; Nanosilver, A.; (2008). nanoproduct in medical application. ToxicolLett; 176: 1-12.
Federici, G.; Shaw, B.; Handy, R.; (2007). Toxicity of titanium dioxide nano-particles to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): injury, oxidative stress, and other physiological effects.Aquatic toxicology Amsterdam Netherlands Issue; 4: 415-430.
Griffitt, R.J.; Hyndman, K.; Denslow, N.D.; Barber, D.S.; (2009). Comparison of molecular and histological changes in zebrafish gills exposed to metallic nanoparticles. Toxicol Sci; 107: 404-15.
Griffitt, R.J.; Luo, J.; Gao, J.; Bonzongo, J.C.; Barber, D.S.; (2008). Effects of particle composition and species on toxicity of metallic nanomaterials in aquatic organisms. Environ Toxicol Chem; 27: 1972-8.
Jabbari, H.; Mansouri, N.; Abdollahi, A.; Chehrehei, M.; Naddafi, K.; (2009). Studying the Effect of Nanosilver Painting on Control of Air-Transmitted Fungi. IJHE; 2(1): 28-35.
Kreyling, WG.; (2010). A complementary definition of nanomaterial. Nano Today; 5: 165-168.
Laban, G.; Nies, L.F.; Turco, R.F.; Bickham, J.W.; Sepúlveda, M.S.; (2010). The effects of silver nanoparticles on fathead minnow (Pimephalespromelas) embryos. Ecotoxicology; 19: 185-95.
Mühling, M.; Bradford, A.; Readman, JW.; Somerfield, PJ.; Richard, DH.; (2009). An investigation into the effects of silver nanoparticles on antibiotic resistance of naturally occurring bacteria in an estuarine sediment. Mar Environ Res; 68: 278-283.
Okkyoung, C.; Clevenger, TE.; Deng, B.; Rao, YS.; Ross, LJr.; Zhiqiang, Hu.; (2009). Role of sulfide and ligand strength in controlling nanosilver toxicity. Water Res; 43: 1879-1886.
Oberdorster, G.; Oberdorster, E.; Oberdorster, J.; (2005). Nano toxicology. An emerging discipline evolving from studies of ultrafine particles. Environ Health Perspect; 113: 823-39.
Park, K.H.; Chhowalla, M.; Iqbal, Z.; (2003). Single-walled carbon nanotubes are a new class of ion channel blockers. J Biol Chem; 278: 50212-26.
Pinto, VV.; Ferreiraa, MJ.; Ricardo Hélder, AS.; Silva, F.; Carlos, MP.; (2010). Long time effect on the stability of silver nanoparticles in aqueous medium: Effect of the synthesis and storage conditions. Colloid Surface Physico-chem Eng Aspect; 364: 19-25.
Rahman Nia, J.; (2009). Preparation of colloidal nanosilver. US Patent application docket 20090013825. 2009.
Roberts, R.J.; (2001). Fish Pathology. W. B. Saunders. P. 472.
Roy, R.; Hoover, R.; Dey, S.; (2006). Nano concentration of nano particles of silver in pure water produce a world class antibiotic. MS&T '06 Symposium Abstract, Cincinnati, OH; 11-1.
Sanpui, P.; Murugadoss, A.; Prasad, P.V.D.; Ghosh, S.S.; Chattopadhyay, A.; (2008). The antibacterial properties of a novel chatoyant Ag-nanoparticle composite. International Journal of Food Microbiology; 124, 142- 146.
Schreck, C.B.; Moyle, P.B.; (1990). Methods for fish biology. American Fisheries Methods for fish biology. American Fisheries Society, pp: 491-525.
Scown, T.M.; Santos, E.M.; Johnston, B.D.; Gaiser, B.; Baalousha, M.; Mitov, S.; Lead, G.R.; Stone, V.; Fernandez, T.F.; Jepson, M.; Aerle, R.V.; Tyler, C.R.; (2010). Effects of Aqueous Exposure to Silver Nanoparticles of Different Sizes in Rainbow Trout. Toxicological Sciences; 115(2), 521-534.
Simonto, J.D.; Guedes, C.L.B.; Martinez, C.B.R.; (2008). Biochemical, physiological, and histological changes in the Neotropical fish Prochiloduslineatus exposed to diesel oil, Ecotoxicol.Environ. Ssaf. Society, pp: 491-525.
Thabet, MT.; Amro, B.; Genaidy, A.; Kirk, G.S.; (2010). An evidence-based environmental perspective of manufactured silver nanoparticle in syntheses and applications: A systematic review and critical appraisal of peer-reviewed scientific papers. Sci Total Environ; 408: 999-1006.
Wise, J.P.; Goodale, B.C.; Wise, S.S.; Craig, G.A.; Pongan, A.F.; Walter, R.B.; Thompson, W.D.; Ng, A.K.; Aboueissa, A.M.; Mitani, H.; Spalding, M.J.; Mason, M.D.; (2010). Silver nanospheres are cytotoxic and genotoxic to fish cells. Aquat Toxicol; 1; 97(1): 34-41.
Wu, Y.; Zhou, Q.; Li, H.; Liu, W.; Wang, T.; Jiang, G.; (2010). Effects of silver nanoparticles on the development and histopathology biomarkers of Japanese medaka (Oryziaslatipes) using the partial-life test. Aquat Toxicol; 100: 160.
Yeo, M.K.; Kang, M.; (2008). Effects of nanometer sized silver materials on biological toxicity during zebrafish embryogenesis. Bull Korean Chem Soc; 29: 1179-84.
Yoon, KY.; Hoon-Byeon, J.; Park, JH.; Hwang, J.; (2007). Susceptibility constants of Escherichia coli and Bacillus subtilis to silver and copper nanoparticles. Sci Total Environ; 373: 572-5. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,717 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 659 |
||