پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شماره‌ها | 1,170 |
| تعداد مقالات | 10,078 |
| تعداد مشاهده مقاله | 18,870,412 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 13,093,059 |
ارزیابی بیمارگری جدایه بومی قارچ Trichoderma harzianum Rifai (Ascomycota: Hypocreales) روی حشرات بالغ ملخChrotogonus trachypterus Blanchard (Orth.: Pyrgomorphidae) در شرایط آزمایشگاهی | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| مقاله 7، دوره 7، شماره 2 - شماره پیاپی 26، آذر 1397، صفحه 71-80 اصل مقاله (464.81 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/eab.2018.5182 | ||
| نویسندگان | ||
| مصطفی حمزه ای* 1؛ علی میرشکار2؛ محمد سالاری3؛ عباس خانی3؛ سیدکاظم صباغ4 | ||
| 1مدرس دانشگاه پیام نور زابل | ||
| 2استادیار گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، ایران. | ||
| 3دانشیار گروه گیاهپزشکی دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، ایران | ||
| 4دانشیار، گروه زیست‌شناسی، پردیس علوم دانشگاه یزد، ایران | ||
| چکیده | ||
| چکیده ملخ Chrotogonus trachypterus (Orth.: Pyrgomorphidae)، از آفات بومی و مهم سیستان بوده و خسارت قابل توجهی را به محصولات زراعی، بهخصوص در مرحله گیاهچهای آنها، وارد می‌آورد. به منظور معرفی عامل کنترل بیولوژیک، کارایی جدایه‌ای بومی از قارچ Trichoderma harzianum در کنترل میکروبی حشرات کامل ملخ C. trachypterus در قالب طرح بلوک کاملاً تصادفی به صورت آزمایش فاکتوریل و در سه تکرار بهروش موضعی در شرایط آزمایشگاهی مورد بررسی قرار گرفت. پس از انجام آزمایشهای مقدماتی، پنج غلظت 104×1، 105×1، 106×1، 107×1 و 108×1 کنیدی/ میلیلیتر آب مقطر حاوی Tween®80 05/0%، تهیه و با استفاده از میکرواپلیکاتور در زیر پیش‌گرده حشرات کامل قرار داده شد. حشرات کامل شاهد با آب مقطر حاوی Tween®8005/0%، تیمار شدند. مرگومیر تجمعی ملخها، بهصورت روزانه تا ۱۵ روز پس از شروع آزمایش، ثبت شد. دادهها با استفاده از روش لگاریتم- پروبیت برازش گردیدند. نتایج آزمون بیماریزایی نشان داد جدایه قارچی روی حشرات کامل بیماریزا بوده و درصد مرگومیر حشرات کامل با افزایش غلظت سوسپانسیون کنیدی قارچ افزایش یافت. نتایج نشاندهنده بالاترین میانگین درصد و مرگومیر (75%) در غلظت 108×1 کنیدی/ میلیلیتر و پائینترین درصد و مرگومیر (25%) در غلظت 104×1 کنیدی/ میلیلیتر بود (05/0p<). مقدار بهدستآمده LC50 معادل 106×01/1 کنیدی در میلیلیتر بود. این اولین گزارش از بیمارگری قارچ T. harzianumروی ملخ C. trachypterus است. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| واژه‌های کلیدی:Trichoderma harzianum؛ Chrotogonus trachypterus؛ بیمارگری؛ زیست‌سنجی؛ کنترل بیولوژیک | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Pathogenicity assessment of an indigenous strain of Trichoderma harzianum Rifai (Ascomycota: Hypocreales) to the grasshopper, Chrotogonus trachypterus (Orth.: Pyrgomorphidae) (B.) in laboratory conditions | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Mostafa Hamzei1؛ Ali Mirshekar2؛ Mohammad Salari3؛ Abbas Khani3؛ Seyed Kazem Sabbagh4 | ||
| 2Lecturer, Payame-Noor University of Zabol, Iran. | ||
| 3Associate Professor, Department of Plant Protection, Faculty of Agriculture, University of Zabol, Iran. | ||
| 4Associate Professor, Department of Biology, Campus of Science, Yazd University, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Abstract The Sugarcane grasshopper (Chrotogonus trachypterus) is one of the most important and indigenous and harmful pest of field crops in Sistan region of Iran and cause considerable damage especially during seedling stages. We conducted this study in order to introduction of a biocontrol agent to C. trachypterus in a completely randomized designs and factorial experiment with three replications using topical application under laboratory conditions. For inoculations, after the preliminary experiments, five fungal suspensions prepared at consecrations of 1×104, 1×105, 1×106, 1×107 and 1×108 conidia mL-1 in distilled water containing 0.05% Tween-80®. Grasshoppers typically inoculated under the pronotal shield using a Hamilton microaplicator. Control treatment were treated with distilled water containing 0.05% Tween-80® as surfactant. The corrected cumulative percent mortality was recorded daily until 15 days after inoculations. Percentage of insect mortality was analyzed using (log-probit) methods.Results showed T. harzianum was pathogenic to adult insects and insect mortality increased with increasing concentrations. The highest and lowest mortality observed at 108 conidia mL-1 and 104 conidia mL-1 with a 75 and 25 percent respectively (p50value was 1.01×106conidia mL-1. This is the first report of the pathogenicity of T. harzianum to the grasshopper, C. trachypterus. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Trichoderma harzianum, Chrotogonus trachypterus, Pathogenicity, Bioassay, Biological control | ||
| مراجع | ||
|
References Abbott, W. S.; (1925). A method of computing the effectiveness of an insecticide. Journal of Economic Entomology; 18(2): 265-267.
Abdul-Wahid, O. A.; Elbanna, S. M.; (2012). Evaluation of the insecticidal activity of Fusarium solani and Trichoderma harzianum against cockroaches; Periplaneta americana. African Journal of Microbiology Research; 6(5): 1024-1032.
Asad, R.; Awan, M. S.; Abro, G. H.; Shah, A. A.; (2001a). Studies on feeding, copulation, oviposition and defense behavior of Chrotogonus trachypterus (Blanch.) (Orthoptera: Pyrgomorphidae) under laboratory conditions. Pakistan Journal of Zoology; 33(2): 85-91.
Asad, R.; Awan, M. S.; Abro, G. H.; Shah, A. A.; (2001b). Studies on biology of Chrotogonus trachypterus (Blanch.) (Orthoptera: Pyrgomorphidae) under laboratory conditions. Pakistan Journal of Zoology; 33(1): 7-12.
Barelli, L.; Moonjely, S.; Behie, S. W.; Bidochka, M. J.; (2016). Fungi with multifunctional lifestyles: endophytic insect pathogenic fungi. Plant Molecular Biology; 90(6): 657-664.
Benitez, T.; Rincón, A. M.; Limón, M. C.; Codón, A. C;(2004). Biocontrol mechanisms of Trichoderma strains. International microbiology; 7: 249-260.
Biswas, C.; Dey, P.; Satpathy, S.; Satya, P.; (2012). Establishment of the fungal entomopathogen Beauveria bassiana as a season long endophyte in jute (Corchorus olitorius) and its rapid detection using SCAR marker. Biocontrol; 57: 565-571.
Butt, T.; Jackson, M. C.; Magan, N.; (2001). Fungi as Biocontrol Agents: Progress, Problems and Potential. Australian Entomologist; 2: 23- 26.
Cardoza, Y. J.; Klepzig, K. D.; Raffa, K. F.; (2006).Bacteria in oral secretions of an endophytic insect inhibit antagonistic fungi. Ecological Entomology; 31 (6): 636-645.
Faria, M.; Wraight, S. P.; (2001). Biological control of Bemisia tabaci with fungi. Crop protection; 20(9): 767-778.
Faria, M. R.; Wraight, S. P.; (2007). Mycoinsecticides and mycoacaricides: a comprehensive list with worldwide coverage and international classification of formulation types. Biological Control; 43(3): 237-256.
Ganassi, S.; Altomare, C.; Sabatini, M. A.; (2009). Interactions between fungi belonging to the genus Trichoderma and Myzus persicae (Hemiptera: Aphidoidea) to open new perspectives of biological control. Italian Journal of Mycology; 38(3): 3-9.
Gathage, J. W.; Lagat, Z. O.; Fiaboe, K. K. M.; Akutse, K. S.; Ekesi, S.; Maniania, N. K.; (2016). Prospects of fungal endophytes in the control of Liriomyza leafminer flies in common bean Phaseolus vulgaris under field conditions. BioControl; 61(6): 741-753.
Greenfield, M.; Gómez-Jiménez, M. I.; Ortiz, V.; Vega, F. E.; Kramer, M.; Parsa, S.; (2016). Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae endophytically colonize cassava roots following soil drench inoculation. Biological Control; 95: 40-48.
Harman, G. E.; (2006). Overview of mechanisms and uses of Trichoderma spp. Phytopathology; 96: 190-194.
Howell, C. R.; (2003). Mechanisms employed by Trichoderma species in the biological control of plant diseases: The history and evolution of current concepts. Plant Disease; 87(1): 4-10.
Jassim, H. K.; Foster, H. A.; Fairhurst, C. P.; (1990). Biological control of Dutch elm dis ease: larvicidal activity of T. harzianum, T. polysporum and Scytalidiumlignicola in Scolytus scolytus and S. multistriatus reared in artificial culture. Annual of Applied Biology; 117: 187-96
Meena, S.; Kachhwaha, N.; Meena, G. (2015). Screening of toxicity of plant extracts against Acridid Grasshopper, Chrotogonus trachypterus Blanchard. Advances in Applied Science Research; 6(4): 65-68.
Meena, S.; Singh, N. P.; (2014). Ultrastructural changes in female reproductive organ of Chrotogonus trachypterus Blanchard induced by Deltamethrin. IOSR Journal of Agriculture and veterinary Science; 7(5): 1-6.
Mirshekar, A.; Ghazavi, M.; Azmayeshfard, P.; Kharazi-Pakdel, A.; (2004). Comparative and laboratory study of pathogencity of Beauveria bassiana and Metarhizium anisopliae on Chrotogonus trachypterus. MSc. Dissertation. The University of Tehran.
Nautiyal, C. S.; Dion, P.; (2008). Molecular mechanisms of plant and microbe coexistence. Berlin: Springer.
Omara, H.; (1997). Study of biology and bioecology of the grasshoppers, Chrotogonus spp. in Sistan and Baluchistan province. Final report of the research project; pages 27-19.
Ownley, B. H.; Gwinn, K. D.; Vega, F. E.; (2009). Endophytic fungal entomopathogens with activity against plant pathogens: ecology and evolution., pp. 113-128. in:The ecology of fungal entomopathogens. Eds., Helen E. R., H. E.; Vega, F. E.; Chandler, D.; Goettel, M. S.; Pell, J.; Wajnberg, E.; Springer, Netherlands.
Parsa, S.; Ortiz, V.; Vega, F. E.; (2013). Establishing fungal entomopathogens as endophytes: towards endophytic biological control. JoVE (Journal of Visualized Experiments); (74): e50360-e50360.
Renuka, S., Ramanujam, B.; Poornesha, B.; (2016). Endophytic Ability of Different Isolates of Entomopathogenic Fungi Beauveria bassiana (Balsamo) Vuillemin in Stem and Leaf Tissues of Maize (Zea mays L.). Indian Journal of Microbiology; 56(2); 126-133.
Samuelian, S.; (2016). Potential of Trichoderma harzianum for control of banana leaf fungal pathogens when applied with a food source and an organic adjuvant. 3 Biotech; 6(1): 1-11.
Santamarina, M.; Roselló, J.; Llacer, R.; Sanchis, V.; (2002). Antagonistic activity of Penicillium oxalicum Corrie and Thom, Penicillium decumbens Thom and Trichoderma harzianum Rifai isolates against fungi, bacteria and insects in vitro. Revista iberoamericana de micología; 19 (2): 99-103.
Shakeri, J.; Foster, H. A.; (2007). Proteolytic activity and antibiotic production by Trichoderma harzianum in relation to pathogenicity to insects. Enzyme and Microbial Technology; 40(4): 961-968.
St. Leger R. J.; Cooper, R. M.; Charnley, A. K.; (1987b). Distribution of chymoelastases and trypsin-like enzymes in five species of entomopathogenic Deuteromycetes. Archives of Biochemistry and Biophysics; 258(1): 123-131.
Tefera, T.; Vidal, S.; (2009). Effect of inoculation method and plant growth medium on endophytic colonization of sorghum by the entomopathogenic fungus Beauveria bassiana. BioControl; 54(5): 663-669.
Vega, F. E.; Meyling, N. V.; Luangsa-ard, J. J.; Blackwell, M.; (2012). Fungal entomopathogens., pp. 171-220. in: Insect pathology. (2nd ed.). Eds., Vega, F. E.; Kaya H. K.; Elsevier Science.
Vega, F. E.; Posada, F.; Aime, M. C.; Pava-Ripoll, M.; Infante, F.; Rehner, S. A.; (2008). Entomopathogenic fungal endophytes. Biological Control; 46:
72-82.
| ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 619 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 661 |
||