پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شماره‌ها | 1,112 |
| تعداد مقالات | 9,521 |
| تعداد مشاهده مقاله | 17,166,533 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,020,331 |
مطالعات تجربی اثر داربست سلولزداییشده مزانتر گاو بر رفتار سلول‌های بلاستمایی در شرایط In vitro | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| مقاله 12، دوره 8، شماره 4، خرداد 1399، صفحه 131-142 اصل مقاله (1.13 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/eab.2020.42299.1652 | ||
| نویسندگان | ||
| بی بی فاطمه فانی یزدی1؛ اسماعیل فتاحی* 2؛ ناصر مهدوی شهری3؛ محمد مهدی قهرمانی سنو4 | ||
| 1دکتری، گروه زیست‌شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد آیت الله آملی، آمل، ایران | ||
| 2استادیار، گروه زیست‌شناسی دانشگاه آزاد واحد آیت‌الله آملی | ||
| 3استاد، گروه زیست‌شناسی سلولی و مولکولی، مؤسسه آموزش‌عالی کاویان، مشهد، ایران | ||
| 4استادیار، گروه ژنتیک مولکولی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران | ||
| چکیده | ||
| برهم‌کنش بین ماتریکس خارج سلولی و سلولها در جهت‌گیری رفتار سلولها نقش اساسی دارد. تاکنون داربستهای مختلفی جهت بررسی رفتار سلولها در شرایط سه بعدی ساخته شده‌اند. هدف از این مطالعه، بررسی برهم‌کنش بین داربست سلولزداییشده مزانتر گاو با بافت بلاستمای حاصل از لاله گوش خرگوش نر نژاد نیوزلندی میباشد. بافت مزانتر با ابعاد mm5×mm5 تهیه و پس از استفاده از روشهای فیزیکی (انجماد آهسته و ذوب سریع) و روشهای شیمیایی (استفاده از سدیم دو دسیل سولفات SDS و تریتون X-100) سلول‌زدایی شده و سپس مراحل شستشو و استریل کردن صورت گرفت. این قطعات به‌عنوان داربستی در حلقههای بافت بلاستمای حاصل از پانچ لاله گوش خرگوش مونتاژ و کشت داده شد. در روزهای 3، 7، 10، 15 و 21 کشت، نمونهبرداری انجام گردید. برهمکنشهای بین داربست و سلول‌های بافت بلاستما به‌کمک روشهای بافت‌شناسی و مطالعات میکروسکوپ نوری، فلورسنت و الکترونی نگاره و گذاره، مورد مطالعه قرار گرفت. مطالعه رفتار سلول‌های بلاستمایی در روزهای مختلف کشت علاوه بر مهاجرت و استقرار سلول‌های بلاستما روی داربست سلولزداییشده مزانتر نشان داد که این داربست قادر به بازیابی ساختار مویرگ‌های خونی، سلول‌های فیبروبلاستی و چربی نیز می‌باشند. براساس یافتههای بافت‌شناسی، نتایج نشان داد که بافت بلاستما دارای سلول‌های پویایی است که میتوانند به داخل داربست مهاجرت کنند. از طرف دیگر ویژگی‌های ماتریکس سلول‌زدایی مزانتر گاو، می‌تواند اتصال، مهاجرت و احتمالاً تمایز سلول‌های بلاستمایی را در شرایط In vitro پشتیبانی نماید. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| برهم‌کنش سلول ماتریکس؛ بلاستما؛ داربست سه‌بعدی مزانتر؛ سلول‌زدایی؛ مهاجرت | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Experimental studies on the effect of the scaffold derived decellularized bovine mesentery on the behavior of Blastema cells In vitro | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Bibi Fatemeh Fani Yazdi1؛ Esmail Fattahi2؛ Naser Mahdavi Shahri3؛ Mohammad Mahdi Ghahramani Seno4 | ||
| 1Ph. D., Department of Biology, Islamic Azad University, Ayatollah Amoli Branch, Amol, Iran | ||
| 2Assistant Professor of Developemental Biology, Ayatollah Amoli Branch Azad University, Amol, Iran | ||
| 3Professor, Department of Cell Biology, Kavian, Higher Education Institute, Mashhad, Iran | ||
| 4Assistant Professor, Division of Biotechnology, Department of Pathobiology, School of Veterinary Medicine, Ferdowsi University of Mashhad, Mashhad, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| The interaction between ECM and cells plays an important role in the direction of cellular behavior. So far, different scaffolds have been developed to examine the behavior of cells in three-dimensional conditions. The aim of this study was to investigate the interaction between the mesenteric decellularized scaffold of the bovin and the blastema tissue originated from the pinna of New Zealandwhite rabbit. Mesenteric bovine tissue (5 mm×5 mm) was decellularized using physical methods (slow freezing and snap freeze–thaw) and chemical agents (sodium dodecyl sulfate (SDS) and Triton Х-100) followed by washing and sterilization procedures.These parts were assembled as scaffolds inside the blastema rings from rabbit’s pinna. Sampling was carried out on days 7, 10, 15 and 21. Interactions between the scaffolds and the blastema tissue cells were studied by histological and fluorescence microscopy and electron microscopy.The study of the behavior of Blastema cells in different days of culture in addition to the migration and maintenance of Blastema cells on mesenteric decellularized scaffold showed that these scaffolds were able to restore the structure of blood capillaries, fibroblast and fat cells.Based on histological findings, the results indicate that the Blastema tissue has dynamic cells that can migrate into the scaffold.Furthermore the characteristics of the mesenteric decellularized ECM can support adhesion, migration and differentiation of blastema cells in vitro. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Blastema, Bovine mesentery scaffold, cell matrix interaction, Decellularization, maintenance | ||
| مراجع | ||
|
Andreal, G.; Eva, F.; Sticova, E.; Kosinova, L.) 2017 .(The Optimal Timing for Pancreatic Islet Transplantation into Subcutaneous Scaffolds Assessed by Multimodal Imaging.Contrast Media & Molecular Imaging; 13: 69-77.
Atala, A.; Bauer, S.B.; Soker, S.; Yoo, J.J.; Retik, A.B.) 2006 .(Tissue-engineered autologous bladders for patients needing cystoplasty. The lancet; 367(9518): 1241-1246.
Badylak, S.F.; Freytes, D.O.; Gilbert, T.W. (2009). Extracellular matrix as abiological scaffold material: structure and function. ActaBiomate; 5(1):1-13.
Baharara, J.; Mahdavishahri, N.; Saghiri, N.; Rasti, H. (2012). Histologicalstudy of interaction between blastema tissue and decellularized three-dimensional matrix of bladder. Zahedan J Res Med Sci; 14(7): 8-13.
Clay, M.P.; Vera, L.C.; Martins, A. (2015). Metalloproteinases and Wound Healing. Adv Wound Care; 4(4): 225-234.
Corcoran, J.P.; Ferrtti, P.RA. (1999). regulation of keratinexpression and myogenesid suggests different ways ofregenerating muscle in adult amphibian limbs. J Cell Sci; 112(pt9): 1385-94.
Crapo, P.M.; Gilbert, T.W.; Badylak, S.F. (2011). An overviewof tissue and whole organ decellularization processes. Biomaterials; 32: 3233‐3243.
Elder, B.D.; Eleswarapu, S.V.; Athanasiou, K.A. (2009). Extraction techniques for the decellularization of tissue engineered articular cartilage constructs. Biomaterials; 30(22): 3749-3756.
Even-Ram, S.; Yamada, K.M. (2005). Cell migration in 3D matrix. CurrOpin Cell Biol; 17(5): 524-532.
Flynn, L.E.; Prestwich, G.D.; Semple, J.L.; Woodhouse, K.A. (2008). Proliferationand differentiation of adipose-derived stemcells on naturally derived scaffolds. Biomaterials; 29(12); 1862-1871.
Friedl, P.; Wolf, K. (2003). Tumour-cell invasion and migration: diversity and escape mechanisms. Nat Rev Cancer; 3(5): 362-374.
Gardiner, D.M.; Muneoka, K.; Bryant, S.V. (1986). the migration of dermal cellsduringblastema formation in axolotls. DevBiol; 118(2): 488-493.
Gilbert, T.W.; Sellaro, T.L.; Badylak, S.F. (2006). Decellularization of tissues and organs. Biomaterials; 27: 3675‐3683.
Goss, R.J.; Grimes, L.N. (1975). Epidermal downgrowths in regenerating rabbit ear holes. J Morphol; 146(4): 533-542.
Hashemzadeh, M.R.; MahdaviShahri, N.; Bahrami, A.R.; Kheirabadi, M.; Naseri, F.; Atighi, M. (2015). Use of an in vitro model in tissue engineering to study wound repair and differentiation of blastema tissue from rabbit pinna. In Vitro Cell. Dev. Biol. Animal; 51(7): 680-9.
MahdaviShahri, N.; Baharara, J.; Takbiri, M.; KhajehAhmadi, S. (2013). In Vitro Decellularization of Rabbit Lung Tissue.Cell Journa; 15(1): 83-88.
Maillet, M. (1979). Les tissus de soutien. 3rd edn. Vigot editions paris.
Mantovani, M.; Carmem, T.; Correa-Giannella, C. (2018). Decellularized pancreas bioscaffold generation aiming at Type 1 Diabetes therapeutic. DiabetesMetab; 14(2): 22-29.
Murphy, C.M.; Haugh, M.G.; Obrieen, F.J. (2010). The effect of mean pore size on cell attachment, proliferation and migration in collagen glycosaminoglycan scaffolds for bone tissue Engineering Biomaterials; 31: 461-466.
Naderi, S.; KhayatZadeh, J.; Mahdavi Shahri, N.; NejadShahrokhAbady, K.; Cheravi, M.; Baharara, J.; et al. (2013). Three‐dimensional scaffold fromdecellularized human gingiva for cell cultures:glycoconjugates and cell behavior. Cell J; 15: 166‐175.
Pollot, B.E.; Goldman, S.M.; Wenke, J.C.; Corona, B.T. (2016). Decellularized extracellular matrix repair of volumetric muscle loss injury impairs adjacent bone healing in a rat model of complex musculoskeletal trauma. J. Trauma Acute Care Surg; 81(5): 184-190.
Raeber, G.P.; Lutolf, M.P.; Hubbell, J.A. (2007). Mechanisms of 3-D migration and matrix remodeling of fibroblasts within artificial ECMs. ActaBiomater; 3(5): 615-629.
Schaner, P.J.; Martin, N.D.; Tulenko, T.N.; Shapiro, I.M.; Tarola, N.A.; Leichter, R.F.; Carabasi, R.A.; Dimuzio, P.J. (2004). Decellularized vein as a potential scaffold for vascular tissue engineering. Vascular surgery; 40(1): 146-53.
Tottey, S.; Johnson, S.A.; Crapo, P.M.; Reing, J.E.; Zhang, L.; Jiang, H.; et al. (2011). The effect of source animal age upon extracellular matrix scaffold properties. Biomaterials; 32(1): 128-36.
Wolf, M.T.; Daly, K.A.; Reing, J.E.; Badylak, S.F. (2012). Biologic scaffold composed of skeletal muscle extracellular matrix. Biomaterials; 33(10): 2916-2925. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 308 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 208 |
||