پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شماره‌ها | 1,129 |
| تعداد مقالات | 9,650 |
| تعداد مشاهده مقاله | 17,543,779 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,251,771 |
پاسخ‌های بیوشیمیایی و مولکولی دو رقم بومی کشت‌شده (لندریس) گندم نان به تنش شوری در دوره‌های زمانی مختلف | ||
| فصلنامه علمی زیست فناوری گیاهان زراعی | ||
| مقاله 6، دوره 9، شماره 2 - شماره پیاپی 28، اسفند 1398، صفحه 65-81 اصل مقاله (742.82 K) | ||
| نوع مقاله: علمی پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/cb.2020.50477.1794 | ||
| نویسندگان | ||
| نرجس فتاحی1؛ حمید سبحانیان2؛ خدیجه رضوی* 3؛ تهمینه لهراسبی3؛ غلامرضا بخشی خانیکی4 | ||
| 1دانشجوی دکتری فیزیولوژی گیاهی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران | ||
| 2استادیار، گروه زیست‌شناسی دانشگاه پیام نور، تهران، ایران | ||
| 3استادیار، پژوهشکده زیست فناوری کشاورزی، پژوهشگاه ملی مهندسی ژنتیک و زیست فناوری، تهران، ایران. | ||
| 4استاد، گروه زیست‌شناسی دانشگاه پیام نور، تهران، ایران. | ||
| چکیده | ||
| تنش‌های محیطی اثرات جبران‌ناپذیری بر تولید گندم نان (Triticum aestivum L.) که از مهمترین محصولات زراعی است می‌گذارند. از طرفی اعضا خانواده AP2/ERF از مهمترین تنظیم‌کنندگان رونویسی هستند که بر رشد و پاسخ گیاه به تنش‌های زنده و غیرزنده موثرند. برای ارزیابی سازوکار تحمل تنش شوری در گندم فعالیت آنزیم‌های سوپر اکسیددیسموتاز، آسکوربات‌پراکسیداز و کاتالاز در دو لندریس متحمل گندم (3623 و 3625) تحت شوری با آزمایش فاکتوریل در قالب طرح کاملا تصادفی در دو سطح شاهد و 250 میلی مولار شوری در سه تکرار انجام شد. از گیاهچه‌ها در زمان‌های صفر، 1، 3، 6، 12 و 24 ساعت و 10 روز پس از تنش نمونه‌برداری شد. فعالیت آنزیم‌ها در ریشه و اندام هوایی گیاهان اندازه‌گیری شد. توالی نوکلئوتیدیAP2-21 از پایگاه NCBI استخراج و آغازگرها طراحی و قطعه ژن از گندم جدا، همسانه-سازی و توالی‌یابی و با حضور دومین حفاظت شده AP2 تأیید شد. تغییرات بیان TaAP2-21 با روش PCR کمی و با استفاده از آغازگرهای ویژه و ژن بتا اکتین بررسی شد. نتایج نشان‌دهنده اختلاف معنی‌دار فعالیت آنزیم‌ها در زمان‌های مختلف نسبت به شاهد در هر دو بافت هر دو رقم بود و بیشترین تفاوت در تنش‌های کوتاه و میان‌مدت مشاهده شد با این‌حال ظاهرا" در تنش بلندمدت سازوکار آنتی‌اکسیدانی آنزیم‌ها در 3623 فعالتر از 3625 عمل می کنند. بیان ژن تحت شوری در بافت‌های هر دو لندریس کاهش معنی‌داری داشت. احتمالا ژن TaAP2-21 یکی از عوامل بازدارنده رونویسی از ژن‌های پاسخ‌دهنده به شوری بوده و باعث ایجاد حساسیت به شوری در گندم می‌شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| گندم نان؛ شوری؛ عامل‌رونویسی AP2؛ تنش اکسیداتیو | ||
| موضوعات | ||
| بیوتکنولوژی و تنش های زنده و غیرزنده | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Biochemical and molecular responses of two native landraces of bread wheat to salt stress at different time periods | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Narjes Fatahi1؛ Hamid Sobhanian2؛ Khadijeh Razavi3؛ Tahmineh Lohrasebi3؛ Gholamreza BakhshiKhaniki4 | ||
| 1Assistant Professor, Department of Biotechnology, Payame Noor University, Tehran, Iran. | ||
| 2Assistant Professor, Department of Biotechnology, Payame Noor University, Tehran, Iran. | ||
| 3Assistant Professor, Department of Agriculture Biotechnology, National Institute of Genetic engineering and Biotechnology (NIGEB), Tehran, Iran. | ||
| 4Professor, Department of Biology, Payame Noor University, Tehran, Iran. | ||
| چکیده [English] | ||
| Environmental stresses have an irreversible effect on the production of bread wheat (Triticum aestivum L.), one of the most important crop plants. On the other hand, AP2/ERF members are the most important transcriptional regulators that influence plant growth and response to biotic and abiotic stresses. To evaluate the mechanism of salt stress tolerance in wheat the activities of superoxide dismutase, ascorbate peroxidase and catalase in two tolerant wheat landraces (3623 and 3625) under salinity were investigated by completely randomized factorial experiment at control and 250 mM salinity in three replications. Seedlings were sampled at 0, 1, 3, 6, 12 and 24 h and 10 days after stress. The activity of enzymes was measured in the root and shoot of plants. The AP2-21 nucleotide sequence was extracted from the NCBI database and primers were designed and the gene fragment was isolated from wheat and then cloned and sequenced and confirmed by the presence of AP2 conserved domain. TaAP2-21 expression was evaluated by qPCR using specific primers and β-actin housekeeping genes. The results showed a significant difference in enzyme activity at different times compared to control in both tissues of both landraces and the highest was observed in short and medium-term stresses, however, apparently in long term stress the antioxidant mechanism of the enzymes is more active in 3623 than in 3625. Gene expression decreased significantly under salinity in both tissues. The TaAP2-21 gene is probably one of the inhibitors of the transcription of saline responsive genes and causes salt sensitivity in wheat. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| bread wheat, salinity, AP2 transcription factor, oxidative stress | ||
| مراجع | ||
|
acosta-Motos J, Ortuño M, Bernal-Vicente A, Diaz-Vivancos P, Sanchez Blanco M, Hernandez J (2017) Plant responses to salt stress: adaptive mechanisms. Agronomy 7: 18.
Aebi H (1984). [13] Catalase in vitro. Methods in Enzymology. Academic Press.
Agarwal G, Garg V, Kudapa H, Doddamani D, Pazhamala LT, Khan AW, Thudi M, Lee SH, Varshney RK (2016) Genome‐wide dissection of AP2/ERF and HSP90 gene families in five legumes and expression profiles in chickpea and pigeonpea. Plant Biotechnology Journal 14: 1563-1577.
Baloglu MC, Inal B, Kavas M, Unver T (2014a) Diverse expression pattern of wheat transcription factors against abiotic stresses in wheat species. Gene 550: 117-122.
Baloglu MC, Inal B, Kavas M, Unver T (2014b) Diverse expression pattern of wheat transcription factors against abiotic stresses in wheat species. Gene 550: 117-22.
Bradford MM (1976) A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry 72: 248-254.
Caverzan A, Casassola A, Brammer SP (2016) Antioxidant responses of wheat plants under stress. Genetics and molecular biology 39: 1-6.
Dong W, Ai X, Xu F, Quan T, Liu S, Xia G (2012) Isolation and characterization of a bread wheat salinity responsive ERF transcription factor. Gene 511: 38-45.
Giannopolitis CN, Ries SK (1977). Superoxide Dismutases. I. Occurrence in Higher Plants 59: 309-314.
Hernandez M, Fernandez-Garcia N, Diaz-Vivancos P, Olmos E (2010) A different role for hydrogen peroxide and the antioxidative system under short and long salt stress in Brassica oleracea roots. Journal of experimental botany 61: 521-535.
Jan AU, Hadi F, Midrarullah Nawaz MA, Rahman K (2017). Potassium and zinc increase tolerance to salt stress in wheat (Triticum aestivum L.). Plant Physiology and Biochemistry 116: 139-149.
Licausi F, Ohme‐Takagi M, Perata P (2013) APETALA 2/Ethylene Responsive Factor (AP 2/ERF) transcription factors: Mediators of stress responses and developmental programs. New Phytologist 199: 639-649.
Mizoi J, Shinozaki K, Yamaguchi-Shinozaki K (2012) AP2/ERF family transcription factors in plant abiotic stress responses. Biochimica et Biophysica Acta (BBA)-Gene Regulatory Mechanisms 1819: 86-96.
Nakano Y, Asada K (1981) Hydrogen Peroxide is Scavenged by Ascorbate-specific Peroxidase in Spinach Chloroplasts. Plant and Cell Physiology 22: 867-880.
Pandey B, Sharma P, Saini M, Pandey DM, Sharma I (2014) Isolation and characterization of dehydration-responsive element-binding factor 2 (DREB2) from Indian wheat (Triticum aestivum L.) cultivars. Australian Journal of Crop Science 8: 44.
Qin S, Zhang Y-J, Yuan B, Xu P-Y, Xing K, Wang J., Jiang J-H (2014) Isolation of ACC deaminase-producing habitat-adapted symbiotic bacteria associated with halophyte Limonium sinense (Girard) Kuntze and evaluating their plant growth-promoting activity under salt stress. Plant and soil 374: 753-766.
Sairam RK, Rao KV, Srivastava GC (2002) Differential response of wheat genotypes to long term salinity stress in relation to oxidative stress, antioxidant activity and osmolyte concentration. Plant Science 163: 1037-1046.
Shu Y, Liu Y, Zhang J, Song L, Guo C (2016a) Genome-Wide Analysis of the AP2/ERF Superfamily Genes and their Responses to Abiotic Stress in Medicago truncatula. Frontiers in Plant Science 6.
Shu Y, Liu Y, Zhang J, Song L, Guo C (2016b). Genome-wide analysis of the AP2/ERF superfamily genes and their responses to abiotic stress in Medicago truncatula. Frontiers in plant science 6: 1247.
Sohn KH, Lee SC, Jung HW, Hong JK, Hwang BK (2006) Expression and functional roles of the pepper pathogen-induced transcription factor RAV1 in bacterial disease resistance, and drought and salt stress tolerance. Plant molecular biology 61: 897.
Song X, Wang J, Ma X, Li Y, Lei T, Wang L, Ge W, Guo D, Wang Z, Li C (2016). Origination, expansion, evolutionary trajectory, and expression bias of AP2/ERF superfamily in Brassica napus. Frontiers in plant science 7: 1186.
Thamilarasan SK, Park J-I, Jung H-J, Nou I-S (2014) Genome-wide analysis of the distribution of AP2/ERF transcription factors reveals duplication and CBFs genes elucidate their potential function in Brassica oleracea. BMC genomics 15: 422.
Yamasaki K, Kigawa T, Seki M, Shinozaki K, Yokoyama S (2013) DNA-binding domains of plant-specific transcription factors: structure, function, and evolution. Trends in plant science 18: 267-276.
Zhuang J, Sun C-C, Zhou X-R, Xiong A-S, Zhang J (2011) Isolation and characterization of an AP2/ERF-RAV transcription factor BnaRAV-1-HY15 in Brassica napus L. HuYou15. Molecular biology reports 38: 3921-3928.
| ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 458 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 417 |
||