پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شماره‌ها | 1,183 |
| تعداد مقالات | 10,187 |
| تعداد مشاهده مقاله | 19,146,612 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 13,259,045 |
مقایسه اثرات ضدقارچی عصاره‌های مختلف بخش هوایی و ریشه گیاه گل‌گاوزبان ایتالیایی (Echium italicum) بر گونه‌های کاندیدا با دو آنتی‌بیوتیک نیستاتین و فلوکونازول | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| مقاله 11، دوره 9، شماره 1، شهریور 1399، صفحه 123-133 اصل مقاله (988 K) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/eab.2019.45696.1700 | ||
| نویسندگان | ||
| فاطمه نبی پور* 1؛ محمد فضیلتی2؛ بهروز دوستی3؛ رضا میردریکوند3 | ||
| 1دکتری، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه پیام نور اصفهان | ||
| 2استاد، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه پیام نور اصفهان | ||
| 3استادیار، گروه زیست‌شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد خرم‌آباد | ||
| چکیده | ||
| اخیراً به‌علت افزایش عفونت‌های کاندیدیایی و عود مکرر آن‌ها و با توجه به مقاومت گونه‌های کاندیدا به اکثر داروهای ضدقارچی، برای اولین بار خواص ضدقارچی عصاره‌های مختلف از بخش‌های هوایی و ریشه گیاه گل‌گاوزبان ایتالیایی در مقایسه با آنتی‌بیوتیک‌ها مورد بررسی قرار گرفت. در این مطالعه عصاره‌های متانولی، ان-هگزانی و آبی از قسمت‌های مختلف گیاه در غلظت‌های مختلف به روش خیساندن تهیه گردید و روی دو گونه قارچ کاندیدا گلابراتا و کاندیدا تروپیکالیس به روش انتشار دیسک و MIC (حداقل غلظت مهار کنندگی)، MFC (حداقل غلظت قارچ‌کشی) به‌روش میکرودایلوشن بررسی شد. آنتی‌بیوتیک نیستاتین و فلوکونازول به‌عنوان کنترل مثبت، دی متیل سولفوکساید به‌عنوان کنترل منفی استفاده گردید. داده‌ها توسط واریانس یک طرفه ANOVA و آزمون t تست آنالیز شدند. نتایج نشان داد که عصاره‌های مختلف ریشه فعالیت ضدقارچی بیشتری بر علیه هر دو گونه کاندیدا نسبت به بخش هوایی گیاه نشان داد (05/0˂P). عصاره متانولی ریشه بیشترین میانگین قطر هاله عدم رشد و کمترین MIC (μg/μl62/15) و MFC ( μg/μl25/31) علیه کاندیدا گلابراتا نشان داد، به‌طوری‌که میانگین قطر هاله عدم رشد عصاره متانولی ریشه در غلظت 5 میلی‌گرم بر میلی‌لیتر (5/0±5/18) بیشتر از میانگین قطر هاله عدم رشد آنتی‌بیوتیک نیستاتین برای کاندیداگلابراتا می‌باشد. نتایج نشان داد که عصاره‌های این گیاه دارای اثرات ضدقارچی روی هر دو گونه کاندیدا می‌باشد و بعد از آزمایش‌های تکمیلی و بالینی می‌تواند به‌عنوان یک داروی ضدقارچی مناسب علیه عفونت‌های ناشی از کاندیدا گلابراتا و تروپیکالیس استفاده شود. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| عصاره؛ کاندیدا تروپیکالیس؛ کاندیدا گلابراتا؛ گل‌گاوزبان ایتالیایی | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Comparison of the Antifungal effects of various extracts of aerial part and root of Echium italicum on Candida species with two antibiotics Nystatin and Fluconazole | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Fatemeh Nabipour1؛ Mohammad Fazilati2؛ Behroze Dousti3؛ Reza Mir Derikvand3 | ||
| 1Ph. D., Department of Biology, Faculty of Basic Sciences, Payame Noor University, Isfahan, Iran | ||
| 2Professor, Department of Biology, Faculty of Basic Sciences, Payame Noor Univercity, Isfahan, Iran | ||
| 3Assistant Professor, Department of Biology, Faculty of Basic Sciences, Islamic Azad University, Khorramabad Branch, Lorestan, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| Recently, due to increased Candida infection and frequent recurrence and due to the resistance of Candida species to most antifungal drugs, for the first time, antifungal properties of methanolic, n-hexane and aqueous extracts from different parts of Echium italicum were compared with antibiotics. In this study, methanol, n-hexane and aqueous extracts from different parts of the plant were prepared in different concentrations by soaking method And on two species of Candida glabrata and Candida tropicalis by disk diffusion method and MIC (minimum inhibitory concentration), MFC (minimum fungicidal concentration of growth) by micro dilution method. Antibiotics Nystatin and Fluconazole were used as a positive control and DMSO was used as a negative control. Data were analyzed by one-way ANOVA and t-test. The results showed that different extracts from the root of the plant showed more antifungal activity than the aerial part of the plant against both species of Candida (P<0/05). The methanolic extract of the root showed the highest mean diameter of growth and the lowest MIC (15.62 μg/μl) and MFC (31.25 μg/μl) against Candida glabrata as inhibitory diameter of growth the methanolic extract in concentration of 5mg/ml (18.5±0.5) was higher than Nystatin antibiotic inhibitory diameter of growth for Candida glabrata. The results showed that the extracts of this plant have antifungal effects on both Candida species and after supplementary and clinical trials as an appropriate antifungal agent against Candida glabrata infection and Tropicalis infection. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Candida glabrata, Candida tropicalis, Echium italicum, Extract | ||
| مراجع | ||
|
Abbaszadeh, S.; Radjabian, T.; Taghizadeh, M. (2013). Antioxidant Activity, Phenolic and Flavonoid Contents of Echium Species from Different Geographical Locations of Iran. Journal of Medicinal plants and By-product; 1: 23-31.
Adel Pilerood, S.; Prakash, J. (2019). Evaluation of nutritional composition and antioxidant activity of Borage (Echium amoenum) and Valerian (Valerian officinalis). J Food Sci Technol; 1-10.
Albreht, A.; Vovk, I.; Simonovska, B.; Srbinoska, M. (2009). Identification of shikonin and its ester derivatives from the roots of Echium italicum L.. J Chromatogr A; 1216:3156-3162.
Alias, J.; Barikbin, B.; Khoshzaban, F.; Naseri, M.; Sedaghat, R.; Kamalinejad, M.; et al. (2015). Effect of Arnebia euchroma ointment on post-laser wound healing in rats. J Cosmet Laser Ther; 17: 41-45.
Al-Snafi, A.E. (2017). Phytochemical constituents and medicinal properties of Digitalis lanata and Digitalispurpurea-A review. Indo Am J P Sci; 4(02): 225-234.
Alsanie, W.F.; El-Hallous, E.I.; Dessoky, E.S.; Ismail, I.A. (2018). Viper's Bugloss (Echium vulgare L.) Extract as A Natural Antioxidant and Its Effect on Hyperlipidemiae. International Journal of Pharmacy and Pharmaceutical Research; 8(1): 81-89.
Binzet, R.; Binzet, G.; Gumus, I.; Turunc, E.; Solmaz, U.; Keskin, A.; et al. (2019). Chemical Composition and Antimicrobial Activityof Essential Oil and Various Extracts of Onosmasieheana Hayek Roots. J Essent Oil Bear PL; 1-12.
Camacho-cardoso, J.; Martínez-Rivera, M.; Manzano-Gayosso, P.; Méndez-Tovar, L.J.; López-Martínez, R.; Hernández, F. (2017). Molecular detection of Candida species from hospitalized patients’ specimens. Gac Med Mex; 153: 528-536.
Choi, M.J.;Won, E.J.; Shin, J.H.; Kim, S.H.; Lee, W.G.; Kim, M.N.; et al. (2016). Resistance mechanisms and clinical features of fluconazole-nonsusceptible Candida tropicalis isolates compared with fluconazole-less-susceptible isolates. Antimicrob AgentsChemother; 60: 3653-3661.
Daminakos, H.; Kretschmer, N.; Katarzyna, S.B.; Pietrosiuk, A.; Bauer, R.; Chinou, L. (2012). Antimicrobial and Cytotoxic Isohexenyl naphthazarins from Arnebia euchroma (Royle) Jonst. (Boraginaceae) Callus and Cell Suspension Culture. Molecules; 17: 14310-14322.
DeOliveira, A.S.; Brighente, I.M.C.; Lund, R.G.; Llanes, L.C.; Nunes, R.J.; Bretanha, L.C.; et al. (2017). Antioxidant and Antifungal Activity of Naphthoquinones Dimeric Derived from Lawsone. J Biosci Med; 5: 39-48.
Errante, G.; Motta, G.L.; Lagana, C.; Wittebolle, V.; Sarciron, M-E.; Barret, R. (2006). Synthesis and evalution of antifungal activity of Naphthoquinone derivatives. Eur J Med Chem; 41:773-778.
Eruygur, N.; Yilmaz, G.; Analgesic, O.U. (2012). Antioxidant activity of some Echium species wildgrowing in Turkey. Fabad J Pharm Sci; 37(3): 151-159.
Eruygur, N.; Yılmaz, G.; Kutsal, O.; Yucel, G.; Ustün, O. (2016). Bioassay-guided isolation of wound healing active compounds from Echium species growing in Turkey. J Ethnopharmacol; 185: 370-37.
Eruygur, N. (2018). A Simple Isocratic High-perfomance Liquid Chromatography Method for the Simultaneous Determination of Shikonin Derivatives in Some Echium Species Growing Wild in Turkey. Turk J Pharm Sc; 15(1): 38-43.
Farahani, M. (2013). Antiviral Effect Assay of Aqueous Extract of Echium amoenum-L against HSV-1. Zahedan. J Res Med Sci; 15: 46-48.
Fayemiscott, O.; Osho, A. (2012). Comparison of Antimicrobial Effects of Mezoneuron benthamianum, Heliotropium indicum and Flabellaria paniculata on Candida species. JMed Microbiol; 2(1): 18-23.
Futuro, D.O.; Ferreira, P.G.; Nicoletti, C.D.; Borba-santos, L.P.; Dasilva, F.C.D.; Rozental, S.; et al. (2018). The Antifungal Activity of Naphthoquinones. Integrative Review. AnAcad Bras Cienc; 90(2): 1187-214.
Gharib, A.; Godarzee, M. (2016). Determination of secondary metabolites and antioxidant activity of some Boraginaceae species growing in Iran. Trop J Pharm Res; 15(11): 2464.
Iosif, L.; Preoteasa, C.T.; Murariu-Maqurean, u.; Preoteasa, C.E. (2016). “Clinical study on thermography, as modern investigation method for Candida-associated denture stomatitis”. Romanian Journal of Morphology and Embryology; 57(1): 191-195.
Kretschmer, N.; Rinner, B.; Deutsch, A.J.; Lohberger, B.; Knausz, H.; Kunert, O.; et al. (2012). Melanoma Cells. J Nat Prod; 75(5): 865-9.
Lucchetti, M.A.; Glauser, G.; Kilchenmann, V.; Dübecke, A.; Beckh, G.; Praz, C.; Kast, C. (2016). Pyrrolizidine Alkaloids from Echium vulgare in Honey Originate Primarily from Floral Nectar. J Agric Food Chem; 64(25): 5267-73.
Malekpour, A.; Delnavaz, H.; Hashemlouian, B. (2015). Evaluation of the Antimicrobial Effects of the Alcoholic and Aqueous Extracts of Chenopodium Album and Chenopodium Botrys against Candida Albicans. Tabari JPrev Med; 1(3): 33-40.
Mengltoh, Y.; Dhanashree, B. (2017). Antifungal effect of cow urine distillate on Candida species. Journal of Ayurveda and Integrative Medicine; 8: 233-237.
Mirrezaee, N.; Dakhili, M.; Mehrpour, S.h.; (2017). Effects of antifungal Rue on the candidaalbicans isolated from patients withvaginitis on in vitro during spring andwinter seasons and comparison with two antibiotics. Yafte; 19(2): 50-59. (in Persian)
Morteza-Semnani, K.; Saeedi, M.; Akbarzadeh, M. (2006). Chemical composition and Antimicrobial Activity of Essential oil of Echium italicum L. Jeobp; 55(8): 999-1008.
Nabipour, F.; Dousti, B. (2017). The comparison of the antifungal effects of various extracts Onosma Chlorotricum on Candida albicans and Candida glaberata with two antibiotics fluconazole and nystatin. Yafte; 19(2): 75-84. (in Persian)
Nabipour, F.; Fazilati, M.; Dousti, B.; Mir derikvand, R. (2019). Evaluation of the antifungal effects of different extracts of aerial part and root of Echium italicum on Candida albicans and comparison them with two common antibiotics. Yafte; 21(2): 9-18. (in Persian)
Nayan, R.; Bholodia, V.J. (2011). Antibacterial and antifungal activities from leaf extract of cassia fistula. J Adv pharm Technol Res; 2(2): 104-109.
Nikita, G.; Vivek, P.; Chhaya, G. (2015). Wound-healing activity of an oligomer of alkannin/shikonin, isolated from root bark of Onosma echioides. Nat Prod Res; 37-41.
Okusa, P.N.; Penge, O.; Devleeschouwer, M.; Duez, P. (2007). Direct and indirect antimicrobial effects and antioxidant activity of Cordia gilletii De Wild (Boraginaceae). J Ethnopharmacol; 112: 476-481.
Ozcan, T. (2013). Molecular(PAPDS and Fatty acid) and micro morphological variation of Echium italicum population from turkey. Plantsystematics Evolution; 299(3): 631-641.
Parra-Sánchez, M.; Zakariya-Yousef, B.I.; Castro Méndez, C.; et al. (2017). Candida albicans Germ-Tube Antibody: Evaluation of a New Automatic Assay for Diagnosing Invasive Candidiasis in ICU Patients Mycopathologia; 182(7-8): 645-652.
Patterson, T. (2007). Treatment and Prevention of Fungal Infections. Focus on Candidemia. New York: Applied Clinical Education; 23: 7-80.
Sadri, A.; Khodavandi, A.; Alizadeh, F. (2016). Quorum-sensing quenching compounds Allium sativum, Allium hirtifolium and Allium cepa: the probable quorum- sensing quenching compounds against Candida albicans. Biosci Biotechnol Res Asia; 13: 1457-1468.
Sasaki, K.; Abe, H.; Yoshizaki, F. (2002). In vitro antifungal activity of Naphthaquinon derivatives. Bio Pharm Bull; 25(5): 669-670.
Shahat, A.A.; Mahmoud, E.A.; Al-Mishari, A.A.; Alsaid, M.S. (2017). Antimicrobial Activity of Some Saudin Arabian Herbal Plants. Afr J Tradit Complement A ltern Med; 14(2):161-165
Shameem, N.; N.Kamli, A.; A.parray, J.; Hamid, R.A.; Bandh, S. (2015). Antimicrobial and antioxidant activity of methanol extracts of Arnebia benthamii (Wall ex. G. Don) Johnston a critically endangered medicinal plant of North western Himalaya. Journal of Analytical Science and Technology; 6:36.
Shariatifar, N.; Ebadi Fathabad, A.; Madihi, S. (2016). Antibacterial activity of aqueous and ethanolic extracts of Echium amoenum on food-borne pathogens. J Food Safe & Hyg; 2(3-4): 63-66.
Soliman, S.M.; Semreen, M.H.; El-Keblaway, A.A.; Abdullah, A.; Uppuluri, P.; Ibrahim, A.S.; et al. (2017). Assesment of herbal drugs for promising anticandida activity. BMC Complem Altern M; 17:257.
Sousa, C.; Moita, E.; Valentão, P.; Fernandes, F.; Monteiro, P.; Andrade, P.B. (2015). Effects of colored and non-colored phenolics of Echium plantagineum L. bee pollen inCaco-2 cells under oxidative stress induced by tert-butyl hydroperoxide. J Agric Food Chem; 63: 2083-2091.
Zarghami Moghaddam, P.; Mazandarani, M.; Zolfaghari, M.R.; et al. (2012). Antibacterial and antioxidant activities of root extract of Onosma dichroanthum Boiss. in north of Iran. African Journal of Microbiology Research; 6(8): 1776-1781. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 577 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 377 |
||