پیوندهای مفید
اخبار و اعلانات
آمار
| تعداد نشریات | 41 |
| تعداد شماره‌ها | 1,163 |
| تعداد مقالات | 10,029 |
| تعداد مشاهده مقاله | 18,748,080 |
| تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 13,017,685 |
تأثیر دوستاکسل براسکلت سلولی تخمک موش سوری پس از انجماد شیشه‌ای به روش کرایوتاپ | ||
| فصلنامه علمی زیست شناسی جانوری تجربی | ||
| دوره 9، شماره 2 - شماره پیاپی 34، آبان 1399، صفحه 73-81 اصل مقاله (3.26 M) | ||
| نوع مقاله: مقاله پژوهشی | ||
| شناسه دیجیتال (DOI): 10.30473/eab.2020.45820.1705 | ||
| نویسندگان | ||
| نعیمه دهقانی1؛ مهدی دیانت پور* 2، 3؛ سیدابراهیم حسینی4؛ زهرا خدابنده5؛ حامد دانش پژوه6 | ||
| 1استادیار، گروه زیست‌شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران | ||
| 2دانشیار، مرکز تحقیقات فناوری سلول‌های بنیادی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران | ||
| 3دانشیار، گروه ژنتیک، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران | ||
| 4استاد، گروه زیست‌شناسی، داشکده علوم پایه، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران | ||
| 5استادیار، مرکز تحقیقات فناوری سلول‌های بنیادی، دانشگاه علوم پزشکی شیراز، شیراز، ایران | ||
| 6دکتری، گروه زیست‌شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران | ||
| چکیده | ||
| دوستاکسل به‌عنوان یک عامل پایدارکننده می‌تواند به‌طور بالقوه آسیب وارد شده به اسکلت سلولی تخمک را در طول انجماد شیشه‌ای کاهش دهد. هدف از مطالعه حاضر بررسی تأثیر داروی دوستاکسل بر روی درصد بقا و لقاح آزمایشگاهی تخمک‌ها پس از انجماد شیشه‌ای می‌باشد. موش‌های ماده نژاد NMRI با سن 8 تا 10 هفته با تزریق هورمون‌های PMSG و HCGتحریک تخمک‌گذاری شدند. با استفاده از آنزیم هیالورونیداز 1/0% توده سلولی کومولوس اطراف تخمک برداشته شد. سپس تخمک‌ها به 5 گروه آزمایشی شامل گروه‌های کنترل، دوستاکسل، دوستاکسل+ محلول انجمادی، دوستاکسل+ انجماد شیشه‌ای و انجماد شیشه‌ای تقسیم شدند. تخمک‌های بالغ در محلول‌های انجمادی اتیلن گلیکول و دی متیل سولفوکساید با غلظت 15 درصد و ساکارز 5/0 مولار منجمد شدند. پس از ذوب، درصد بقا و لقاح آنها تا مرحله دو سلولی بررسی گردید. رنگ‌آمیزی میکروتوبول‌ها در تخمک‌ها با آنتی‌بادی آلفاتوبولین انجام شد. میزان لقاح هر گروه در مقایسه با گروه کنترل کاهش قابل‌توجهی نشان داد (001/0P =). میزان تشکیل جنین‌های دو سلولی در هر دو گروه انجمادی (دوستاکسل+ انجماد شیشه‌ای و انجماد شیشه‌ای) به‌طور قابل‌توجهی نسبت به غیرانجمادی کنترل (001/0P=) و دوستاکسل (004/0P =) پایین تر بود. نتایج نشان داد درصد بقا و لقاح در گروه‌های پیش انکوبه شده با دوستاکسل بیشتر از گروه‌های انکوبه نشده بود، بنابراین دوستاکسل با کاهش آسیب‌های وارده به اسکلت سلولی تخمک می‌تواند در بهبود تکنیکهای تولید مثلی مؤثر باشد. | ||
| کلیدواژه‌ها | ||
| انجماد شیشه‌ای؛ تخمک؛ دوستاکسل؛ کرایوتاپ | ||
| عنوان مقاله [English] | ||
| Evaluation of the effect of docetaxel on cryotop-vitrification of mouse oocytes | ||
| نویسندگان [English] | ||
| Naeimeh Dehghani1؛ Mehdi Dianatpour2، 3؛ Seyed Ebrahim Hosseini4؛ Zahra Khodabandeh5؛ Hamed Daneshpazhouh6 | ||
| 1Assistant Professor, Department of Biology, Payame Noor Unvierstiy, Tehran, Iran | ||
| 2Associate Professor, Stem Cells Technology Research Center, Shiraz University of Medical Sciences, Shiraz, Iran | ||
| 3Associate Professor, Stem Cells Technology Research Center, Shiraz University of Medical Sciences, Shiraz, Iran | ||
| 4Professor, Department of Biology, College of Science, Shiraz Branch, Islamic Azad University, Shiraz, Iran | ||
| 5Assistant professor, Stem Cells Technology Research Center, Shiraz University of Medical Sciences, Shiraz, Iran | ||
| 6Ph.D., Department of Biology, Payam Noor University, Tehran, Iran | ||
| چکیده [English] | ||
| As a stabilizing agent, docetaxel can potentially reduce the damage to the oocyte cytoskeleton during vitrification. The aim of the present study was to investigate the effect of docetaxel on the survival rate and in vitro fertilization of oocytes after vitrification. NMRI mice (8-10 weeks old) were superovulated by injecting PMSG and HCG. Oocytes are surrounded by cumulus and corona cells and must be denuded by 0.1% hyaluronidase enzyme. The oocytes were then divided into 5 experimental groups including control, docetaxel, docetaxel+vitrification solution; docetaxel+ vitrification and vitrification. Mature oocytes were vitrified in ethylene glycol and dimethyl sulfoxide solutions at 15% concentration and 0.5 M sucrose. After thawing, their survival and fertilization rates were assessed up to the two-cell stage. Staining of the microtubules in the oocytes was performed with alpha-tubulin antibody. The fertilization rate of each group showed a significant decrease compared to the control group (P=0.001). The rate of formation of 2-cell embryos in both vitrified groups (docetaxel+ vitrified and vitrified vitrified) was significantly lower than non-vitrified (control (P=0.001) and docetaxel ((P=0.004)). The results showed that survival and fertilization rates in pre-incubated groups with docetaxel were higher than non-incubated groups, so docetaxel could improve reproductive techniques by reducing the damage to the oocyte cytoskeleton. | ||
| کلیدواژه‌ها [English] | ||
| Cryotop, docetaxel, oocytes, vitrification | ||
| مراجع | ||
|
Abedpour, N.; Rajaei, F. (2015). Vitrification by cryotop and the maturation, fertilization, and developmental rates of mouse oocytes. Iranian Red Crescent Medical Journal; 17(10).
Bissery, M-C. (1995). Preclinical pharmacology of docetaxel. European Journal of Cancer; 31: S1-S6.
Boiso, I.; Martí, M.; Santaló, J.; Ponsá, M.; Barri, P.N.; Veiga, A. (2002). A confocal microscopy analysis of the spindle and chromosome configurations of human oocytes cryopreserved at the germinal vesicle and metaphase II stage. Human Reproduction; 17(7): 1885-1891.
Bouquet, M.; Selva, J.; Auroux, M. (1992). The incidence of chromosomal abnormalities in frozen-thawed mouse oocytes after in-vitro fertilization. Human Reproduction; 7(1): 76-80.
Chasombat, J.; Nagai, T.; Parnpai, R.; Vongpralub, T. (2015). Pretreatment of in vitro matured bovine oocytes with docetaxel before vitrification: effects on cytoskeleton integrity and developmental ability after warming. Cryobiology; 71(2): 216-223.
Ciotti, P-M.; Porcu, E.; Notarangelo, L.; Magrini, O.; Bazzocchi, A.; Venturoli, S. (2009). Meiotic spindle recovery is faster in vitrification of human oocytes compared to slow freezing. Fertility and Sterility; 91(6): 2399-2407.
Dehghani, N.; Dianatpour, M.; Hosseini, S-E.; Khodabandeh, Z.; Daneshpazhouh, H. (2019). Overexpression of Mitochondrial Genes (Mitochondrial Transcription Factor A and Cytochrome c Oxidase Subunit 1) in Mouse Metaphase II Oocytes following Vitrification via Cryotop. Iranian Journal of Medical Science; 44(5): 406-414.
Devillard, L.; Vandroux, D.; Tissier, C.; Dumont, L.; Borgeot, J.; Rochette, L.; et al. (2008). Involvement of microtubules in the tolerance of cardiomyocytes to cold ischemia-reperfusion. Molecular and cellular biochemistry; 307(1-2): 149-157.
Gomes, C-M.; Silva, C-A-S-E.; Acevedo, N.; Baracat, E.; Serafini, P.; Smith, G-D. (2008). Influence of vitrification on mouse metaphase II oocyte spindle dynamics and chromatin alignment. Fertility and Sterility; 90(4): 1396-1404.
Gueritte-Voegelein, F.; Guenard, D.; Lavelle, F.; Le Goff, M-T.; Mangatal, L.; Potier, P. (1991). Relationships between the structure of taxol analogs and their antimitotic activity. Journal of medicinal chemistry; 34(3): 992-998.
Huang, J-Y.; Chen, H-Y.; Park, J-Y-S.; Tan, S-L.; Chian, R-C. (2008). Comparison of spindle and chromosome configuration in in vitro-and in vivo-matured mouse oocytes after vitrification. Fertility and Sterility; 90(4): 1424-1432.
Jahromi, Z-K.; Amidi, F.; Mugehe, S.; Sobhani, A.; Mehrannia, K.; Abbasi, M.; et al. (2010). Expression of heat shock protein (HSP A1A) and MnSOD genes following vitrification of mouse MII oocytes with cryotop method. Yakhteh Medical Journal; 12(1): 113-119.
Kuwayama, M. (2007). Highly efficient vitrification for cryopreservation of human oocytes and embryos: the Cryotop method. Theriogenology; 67(1): 73-80.
Ledda, S.; Bogliolo, L.; Succu, S.; Ariu, F.; Bebbere, D.; Leoni, G-G. et al. (2006). Oocyte cryopreservation: oocyte assessment and strategies for improving survival. Reproduction, Fertility and Development; 19(1): 13-23.
Morató, R.; Izquierdo, D.; Albarracín, J-L.; Anguita, B.; Palomo, M-J.; Jiménez‐Macedo, A-R. et al. (2008). Effects of pre‐treating in vitro‐matured bovine oocytes with the cytoskeleton stabilizing agent taxol prior to vitrification. Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research; 75(1): 191-201.
Ringel, I.; Horwitz, S-B. (1991). Studies with RP 56976 (taxotere): a semisynthetic analogue of taxol. JNCI: Journal of the National Cancer Institute; 83(4): 288-291.
Roozbehi, A. (2013). Mouse oocytes and embryos cryotop-vitrification using low concentrated solutions: Effects on meiotic spindle, genetic material array and developmental ability. Iranian journal of basic medical sciences; 16(4): 590.
Schmidt, D.; Nedambale, T.; Kim, C.; Maier, D.; Yang, X.; Tian, X. (2004). Effect of cytoskeleton stabilizing agents on bovine matured oocytes following vitrification. Fertility and Sterility; 82: S26.
Shi, W-Q.; Zhu, S-E.; Zhang, D.; Wang, W-H.; Tang, G-L.; Hou, Y-P.; et al. (2006). Improved development by Taxol pretreatment after vitrification of in vitro matured porcine oocytes. Reproduction; 131(4): 795-804.
Sparreboom, A.; Nooijen, W.; Beijnen, J. (1998). Preclinical pharmacokinetics of paclitaxel and docetaxel. Anti-cancer drugs; 9(1): 1-17.
Zhou, C-J.; Wang, D-H.; Niu, X-X.; Kong, X-W.; Li, Y-J.; Ren, J.; et al. (2016). High survival of mouse oocytes using an optimized vitrification protocol. Scientific reports; 6: 19465. | ||
|
آمار تعداد مشاهده مقاله: 632 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 444 |
||