تعداد نشریات | 41 |
تعداد شمارهها | 1,121 |
تعداد مقالات | 9,580 |
تعداد مشاهده مقاله | 17,384,300 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 12,131,450 |
بررسی بیان ژن های AlSOS1 و AlNHX در گیاه هالوفیت Aeluropus littoralis Parl. تحت تنش کلرید سدیم | ||
فصلنامه علمی زیست فناوری گیاهان زراعی | ||
مقاله 3، دوره 1، شماره 2، شهریور 1391، صفحه 27-37 اصل مقاله (390.17 K) | ||
نوع مقاله: علمی پژوهشی | ||
نویسندگان | ||
ولی اله قاسمی عمران* 1؛ عبدالرضا باقری2؛ قربانعلی نعمت زاده3؛ امین میر شمسی4؛ نادعلی بابائیان جلودار5 | ||
1دانشگاه فردوسی مشهد | ||
2دانشگاه فردوسی مشهد، دانشکده کشاورزی | ||
3دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی ساری | ||
4دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی | ||
5عضو هیات علمی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری | ||
چکیده | ||
شوری و به طور عمده کلرید سدیم، از رشد گیاهان جلوگیری نموده و سبب کاهش تولیدات کشاورزی میگردد. در گیاهان عالی دفع و حجره بندی سدیم بواسطه آنتی پورترهای موجود در غشاهای پلاسمایی و واکوئلی انجام می شود. در این مطالعه، الگوی بیان ژنهای AlNHX و AlSOS1 در پاسخ به تیمار شوری 250 میلی مولار کلرید سدیم در زمان های 6 ساعت، 1، 3، 8 و 17 روز پس از اعمال تنش با استفاده از تکنیک Real Time-PCR در گیاه Auleropus مورد بررسی قرار گرفت. سطوح نسخه برداری دو ژن در پاسخ به تنش در همه بافت ها افزایش یافت. بیان ژن AlSOS1 در بافت برگ پس از 6 ساعت افزایش یافت و بیان ژنAlNHX پس از 24 ساعت از اعمال تنش به بالاترین میزان خود رسید. در بافت گره و میانگره سطوح نسخه برداری هر دو ژن، 24 ساعت پس از اعمال تنش به شدت افزایش یافت و سپس در 3 و 8 روز بعد از اعمال تنش به تدریج کاهش یافت تا در نهایت 17 روز پس از تنش به حالت پایدار برابر با شاهد(بدون تنش)بازگشت. میزان بیان هر دو ژن در بافت های ریشه به آهستگی بعد از اعمال تنش افزایش یافت و پس از 3 روز به میزان حداکثر رسید و این میزان بیان تا 8 روز پس از تنش ادامه یافت و در ژن AlNHX پس از 17 روز به حالت پایدار برابر با شاهد بازگشت، در حالی که در مورد ژن AlSOS1 پس از 17 روز همچنان بیان دو برابر شاهد بود | ||
کلیدواژهها | ||
تنش شوری؛ Aeluropus littoralis؛ AlSOS1؛ AlNHX؛ بیان ژن | ||
موضوعات | ||
بیوتکنولوژی و تنش های زنده و غیرزنده؛ ژنتیک مولکولی و مهندسی ژنتیک | ||
عنوان مقاله [English] | ||
Evaluation the expression pattern of AlSOS1 and AlNHX genes under NaCl stress In halophyte grass Aeluropus littoralis Parl. | ||
نویسندگان [English] | ||
V Ghasemi omraan1؛ A Bagheri2؛ GH Nematzadeh3؛ A Mirshamsi4؛ Nadali Babaeian Jelodar5 | ||
چکیده [English] | ||
Salinity, predominantly NaCl, limits plant growth and impairs agricultural productivity. In higher plants, Na+ efflux and compartmentalization are achieved by Na+/H+ antiporters located in both the plasma and vacuolar membranes. Here we investigated the expression pattern of the genes AlNHX and AlSOS1 under 250 mM NaCl treatment after 6h and 1, 3, 8 and 17 days time intervals by Real Time-PCR technique. The transcript levels of AlNHX and al AlSOS1 were up-regulated by salt stress in all tissues. The AlSOS1 expression remarkably increased in leaves after 6 h and the AlNHX transcript abundance reached to the maximum level after 24 h. In node and internode tissues the transcript levels of AlNHX and AlSOS1 increased sharply 24 h after salt treatment and then gradually decreased within 3 and 8 days and finally after 17 days reached to a steady-state in which the mRNA content was similar to that of control plants. The transcript abundance of both genes in roots slightly increased Upon salt treatment and after 3 days reached to their maximum levels and this expression continued until 8 days and then decreased to a basal expression similar to control for AlNHX gene but in AlSOS1 decreased to reach a new steady-state in which the mRNA content was about 2-fold that of control plants. | ||
کلیدواژهها [English] | ||
Salt stress, Aeluropus littoralis, AlSOS1, AlNHX, Expression | ||
مراجع | ||
Barkla BJ, Blumwald E (1991) Identification of a 170-kDa protein associated with the vacuolar Na/Hantiport of Beta vulgaris. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 88: 11177-11181.
Blumwald E (2000) Sodium transport and salt tolerance in plants.Curr.Opin. Cell Biol. 12: 431-434.
Flowers TJ, Yeo AR (1995) Breeding for salinity resistance in crop plants, where next? Aust. J. Plant Physiol. 22: 875–884.
Fukuda A, Nakamura A, Tanaka Y (1999) Molecular cloning and expression of the Na+/H+exchanger gene in Oryza sativa. Biochim. Biophys. Acta. 1446: 149–155.
Garciadebla B, RosariH,Benito B (2007) Cloning of two SOS1 transporters from the seagrass Cymodocea nodosa. SOS1 transporters from Cymodocea and Arabidopsis mediate potassium uptake in bacteria. Plant Mol. Biol. 63: 479–490
Gaxiola RA, Rao R, Sherman A, Grisafi P, Alper SL, Fink GR (1999) The Arabidopsis thaliana proton transporters, AtNhx1 and Avp1, can function in cation detoxification in yeast.Proc. Natl. Acad. Sci. USA 96: 1480-1485.
Glenn E, Brown JJ, Blumwald E (1999) Salt-tolerant mechanism and crop potential of halophytes. Crit. Rev. Plant Sci. 18: 227-255.
Gulzar S, Khan MA, Ungar IA (2003) Effects of salinity on growth, ionic content and plant-water status of Aeluropus lagopoides. Commun. Soil Sci. Plant Anal. 34: 1657-1668.
Hamada A, Shono M, Xia T, Ohta M, Hayashi Y, Tanaka A, Hayakawa T (2001) Isolation and characterization of a Na+/H+antiporter gene from the halophyte Atriplex gmelini. Plant Mol Biol. 46: 35-42.
Li MY, Liu YJ (1994) Halophytes of Yellow River Delta in north Shandong Province of China. J. Qufu. Normal Univ. 125-133.
Martinez-Atienza J, Jiang XY, Garciadeblas B, Mendoza I, Zhu J K, Pardo JM, Quintero FJ (2007) Conservation of the salt overly sensitive pathway in rice. Plant Physiol 143:1001–1012.
Maughan PJ, Turner TB, Coleman CE,Elzinga DB, Jellen EN, Morales JA, Udall JA, Fairbanks D J Bonifacio A (2009) Characterization of Salt Overly Sensitive 1 (SOS1)gene homoeologs in quinoa (Chenopodium quinoa Willd.). Genome .52: 647–657.
Niu X, Bressan RA, Hasegawa PM, Pardo J M (1995) Ion homeostasis in NaCl stressenvironments. Plant Physiol. 109:735–742.
Oh DH, Gong Q, Ulanov A, Zhang Q, Li Y, Ma W, Yun DJ, Bressan RA Bohnert HJ (2007) Sodium Stress in the Halophyte Thellungiella halophila and Transcriptional Changes in a thsos1-RNA Interference Line. J. Integr. Plant. Biol. 49: 1484–1496.
Pardo JM, Rubio F (2011) Na+ and K+ Transporters in Plant Signaling. Signaling and Communication in Plants. 7: 65-98.
Qiu QS, Guo Y, Dietrich MA, Schumaker KS, Zhu JK (2002) Regulation of SOS1, a plasma membrane Na+/H+ exchanger in Arabidopsis thaliana, by SOS2 and SOS3. Proc Natl Acad Sci. USA. 99: 8436–8441.
Shi H, Ishitani M, Kim C, Zhu JK (2000) The Arabidopsis thaliana salt tolerance gene SOS1encodes a putative Na+/H+ antiporter. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 97: 6896–6901.
Takahashia R, Liub S, Takano T (2009) Isolation and characterization of plasma membrane Na+/H+ antiporter genes from salt-sensitive and salt-tolerant reed plants, J Plant Physiol. 166: 301-309.
Tester M, Davenport R (2003). Na+ tolerance and Na+ transport in higher plants. Ann. Bot. 91:503–527.
Wang R Z (2004) Plant functional types and their ecological responses to salinization in saline grasslands, Northeastern China. Photosynthetica 42: 511–519.
Wang X, Yang R, Wang B, Liu G, Yang C,Cheng Y (2010) Functional characterization of a plasma membrane Na+/H+ antiporter from alkali grass (Puccinellia tenuiflora) Mol. Biol. Rep. 38:4813–4822.
Wu Y, Ding N,Zhao X,Zhao M, Chang Z, Liu J, Zhang L (2007) Molecular characterization of PeSOS1: the putative Na+/H+ antiporter of Populus euphratica. Plant Mol. Biol. 65:1–11.
Xu H, Jiang X, Zhan K, Cheng X, Chen X, Xue ZY, Zhi DY, Xue GP, Zhao YX, Xia GM (2004) Enhanced salt tolerance of transgenic wheat (Triticum aestivum L.) expressing a vacuolar Na+/H+antiporter gene with improved grain yield in saline soils in the field and a reduced level of leaf Na+. Plant Sci. 167: 849-859.
Xu H, Jiang X, Zhan K, Cheng X, Chen X, Pardo JM, Cui D (2008)Functional characterization of a wheat plasma membrane Na+/H+ antiporter in yeast. Arch. Biochem. Biophys. 473:8-15.
Yamaguchi T, Apse MP, Shi H, Blumwald E (2003) Topological analysis of a plant vacuolar Na+/H+ antiporter reveals a luminal C terminus that regulates antiporter cation selectivity. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 100:12510-12515.
Zhang HX, Blumwald E (2001) Transgenic salt-tolerant tomato plants accumulate salt in foliage but not in fruit. Nat. Biotechnol. 19:765-768.
Zhang GH, Su Q, An LJ, Wu S (2008) Characterization and expression of a vacuolar Na+/H+ antiporter gene from the monocot halophyte Aeluropus littoralis. Plant Physiol. Biochem. 46: 117-126.
Zhou GA, Jiang Y, Yang Q,Wang JF,Huang JI, Zhang HS (2006) Isolation and characterization of a new Na+/H+ antiporter gene OsNHA1 from rice (Oryza sativa L.). DNA Seq. 17: 24–30.
Zouari N, Ben Saad R, Legavre Th, Azaza J, Sabau X, Jaoua M, Masmoudi K, Hassairi A (2007) Identification and sequencing of ESTs from the halophyte grass Aeluropus littoralis. Gene. 404: 61–69.
Zhu JK (2001) Plant salt tolerance. Trends Plant Sci. 6: 66–71.
Zhu JK (2003) Regulation of ion homeostasis under salt stress. Curr. Opin. Plant Biol. 6: 441-445.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 4,970 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 2,618 |